PRUEBA DE BARFOED

IDENTIFICACIÓN DE AZÚCARES MEDIANTE LA REACCIÓN DE BARFOED

1.OBJETIVOS

1.1 GENERAL

Identificar azúcares haciendo uso de  la reacción de barfoed.

1.2 ESPECÍFICO

• Indicar las características que presenta la reacción de barfoed.
• Deducir que  muestras utilizadas reaccionan más rápido con este reactivo  

2. MARCO TEÓRICO

2.1 INTRODUCCIÓN

La Prueba de Barfoed es un ensayo químico utilizado para detectar monosacáridos. Se basa en la reducción de cobre (II) (En forma de acetato) a cobre (I) (En forma de óxido), el cual forma un precipitado color rojo ladrillo.

RCOH + 2Cu+2 + 2H2O → RCOOH + Cu2O↓ + 4H+

Los disacáridos también pueden reaccionar, pero en forma más lenta. El grupo aldehído el monosacárido que se encuentra en forma de hemiacetal se oxida a su ácido carboxílico correspondiente. Muchas sustancias, entre ellas el cloruro de sodio, pueden interferir en la prueba.

Esta prueba fue descrita por primera vez por el químico danés Christen Thomsen Barfoed y se utiliza principalmente en botánica. La prueba es similar a la prueba de Fehling.

2.1.1 COMPOSICIÓN

El reactivo de Barfoed se compone de una solución de 0.33 molar de acetato de cobre neutro en una solución de 1% de ácido acético. No es recomendable guardar el reactivo, sino prepararlo previamente a su uso.

3.PROCEDIMIENTO

4. RESULTADOS Y DISCUSIÓN

      4.1. RESULTADO PRÁCTICO

GLUCOSA	MALTOSA	REACTIVO
+(precipitado color rojo, es un monosacárido,precipitó antes de los 5 minutos)	- (no precipitó durante los 5 minutos, ya que es un disacárido y este puede precipitar en el intervalo de de 5 a 30 minutos). Si existe precipitado pero es un disacárido y precipitó en un mayor tiempo cuyo precipitado es de color rojo que es el Cu2O	Barfoed

                                                                                               

4.2 DISCUSIÓN

En la muestra de glucosa al colocar el reactivo de barfoed y ponerlo a baño maría se pudo observar que en un tiempo menor a 5 minutos se produjo un precipitado de color rojo, mientras que la maltosa al hacer el mismo procedimiento y en el mismo tiempo no se produjo precipitado , esto se debe a que el reactivo de barfoed sirve para determinar si el azúcar es reductor y tambien si es monosacárido o disacárido como la glucosa reaccionó antes de los 5 min se determina que es un monosacárido mientras que la maltosa no lo hizo por tanto se dice que es un disacárido, los disacáridos precipitan en un intervalo de 5 a 30 minutos ya reacciona de una  forma más lenta. El grupo aldehído del monosacárido que se encuentra en forma de hemiacetal se oxida a su ácido carboxílico correspondiente.

5.   CONCLUSIONES

• Las característica que presenta la reacción de Barfoed son: que se forma un precipitado de color rojo óxido cuproso (Cu2O) cuando es un monosacárido reacciona de 0 a 5 minutos y si es disacárido de 5 a 30 minutos y que es una reaccion de oxidacion.
• La glucosa reacciona más rápido por ser un monosacárido y la maltosa en un tiempo más largo por ser un disacárido.

6. BIBLIOGRAFÍA

PRUEBA DE BARFOED

http://es.wikipedia.org/wiki/Prueba_de_Barfoed

HIDRÓLISIS DE LA SACAROSA

PRUEBA DE HIDRÓLISIS DE LA SACAROSA

1.OBJETIVO

1.1 GENERAL

Ensayar  lo que le sucede a la sacarosa luego del hidrolizado

1.2 ESPECÍFICO

• Observar el resultado de la  hidrólisis sobre  la sacarosa con el reactivo de Fehling
• Comparar lo que sucede en la hidrólisis de la sacarosa con el reactivo de Seliwanoff .

2.MARCO TEÓRICO

La sacarosa que es dextrógira, por la acción de los ácidos se hidroliza para dar cantidades equimoleculares de D(+) Glucosa y D(-) Fructosa. Como la rotación específica de la D(-) Fructosa es mayor que la de la D(+) Glucosa, el curso de la hidrólisis se puede seguir, observando la inversión en el poder rotatorio de la solución. El ácido clorhídrico permite que el enlace glucosídico entre los dos monómeros que forman la sacarosa se hidroliza. Al estar en forma monomérica, las moléculas sufren mutarrotación.

En presencia de ClH (ácido clorhídrico) y en caliente, la sacarosa se hidroliza, es decir, incorpora una molécula de agua y se descompone en los monosacáridos que la forman, glucosa y fructosa, que sí son reductores. La prueba para verificar la hidrólisis se realiza con el licor de Fehling y, si el resultado es positivo, aparecerá un precipitado rojo. Si el resultado es negativo, la hidrólisis no se ha realizado correctamente y si en el resultado final aparece una coloración verde en el tubo de ensayo se debe a una hidrólisis parcial de la sacarosa.

Es el resultado de una reacción química, se produce por la descomposición química de de la sacarosa (azúcar común) o de dos subproductos, (Glucosa y fructosa).

3. PROCEDIMIENTO

4. RESULTADOS Y DISCUSIÓN

4.1 RESULTADO PRÁCTICO

4.2 DISCUSIÓN

PRUEBA DE FEHLING PARA LA HIDRÓLISIS DE LA SACAROSA

PRUEBA DE SELIWANOFF PARA LA HIDRÓLISIS DE LA SACAROSA

La sacarosa es un disacárido que no posee carbonos anoméricos libres por lo que carece de poder reductor y la reacción de fehling es negativa. Sin embargo la sacarosa se hidroliza, es decir incorpora una molécula de agua y se descompone en los monosacáridos que la forman, glucosa y fructosa, que si son reductores. La prueba de que se ha verificado la hidrólisis se realiza con Fehling si el resultado es positivo aparecerá un precipitado rojo.

Esta prueba da negativo por el carácter básico de la solución de  HNO3 y Na2CO3 razón por la cual mezclada con seliwanoff de carácter ácido ambas se neutralizan ; por lo cual se va a agregar 1 gota más de acido con esto pudimos observar que al variar de solución neutra a ácida se puede dar el reconocimiento del color característico rojo.

5. CONCLUSIONES

• Prueba de Fehling para hidrólisis de la sacarosa da positivo con un precipitado color ladrillo
• Prueba de Seliwanoff para hidrólisis de la sacarosa da negativo por el carácter básico de la solución de  HNO3 y Na2CO3 razón por la cual no cambio de color.

6. BIBLIOGRAFÍA

PRUEBA DE HIDRÓLISIS DE LA SACAROSA

https://docs.google.com/document/d/1GahnYvZE-DJYo_e4ObJu_aHilzd42l22vYeh_rqFL6Y/edit?pli=1

REACCIÓN DE YODO (LUGOL)

IDENTIFICACIÓN DE LA REACCIÓN DE YODO (LUGOL)

1. OBJETIVO

1.1 GENERAL

Ensayar la reacción del yodo (lugol).

1.2 ESPECÍFICO

• Indicar las características que presenta la reacción del yodo.
• Comparar las reacciones de lugol con el almidón y lugol con agua.  

2. MARCO TEÓRICO

2.1 INTRODUCCIÓN

El lugol o disolución de Lugol es una disolución de yodo molecular I2 y yoduro potásico KI en agua destilada. Se preparó por primera vez en 1829 y recibe su nombre en honor al médico francés J.G.A. Lugol.

Este producto se emplea frecuentemente como desinfectante y antiséptico, para la desinfección de agua en emergencias y como un reactivo para la prueba del yodo en análisis médicos y de laboratorio.

También se ha usado para cubrir deficiencias de yodo; sin embargo, se prefiere el uso de yoduro potásico puro debido a la ausencia de yodo diatómico, forma molecular cuyo consumo puede resultar tóxico.

Fórmula:

Consiste en 20 gramos de yodo metálico y 40 gramos de yoduro potásico, disueltos en 1 litro de agua destilada. El yoduro potásico facilita la disolución del yodo diatómico, debido a la formación de iones triyoduro I3-.

No debe confundirse el lugol con la tintura de yodo, que consiste en yodo diatómico y sales de yodo disueltos en una mezcla de agua y alcohol etílico (etanol). La disolución de Lugol no contiene alcohol.
Aplicaciones

• En microbiología se emplea en la tinción de Gram para retener el colorante cristal violeta. El I2 entra en las células y forma con el colorante cristal violeta un complejo insoluble en agua.
• También se utiliza como contraste visual en parasitología.

• Se utiliza esta solución como indicador en la prueba del yodo, que sirve para identificar polisacáridos como los almidones, glucógeno y ciertas dextrinas, formando un complejo de inclusión termolábil que se caracteriza por presentar distintos colores según las ramificaciones que presente la molécula de polisacárido. El lugol no reacciona con azúcares simples como la glucosa o la fructosa.

• Se puede usar como un colorante para células, haciendo el núcleo celular más visible en microscopías y para preservar muestras de fitoplancton.

• En una colposcopia, la disolución de Lugol se utiliza en la prueba de Schiller en busca de tejido vaginal canceroso.

• Se puede usar la disolución de Lugol para observar la forma en la que la membrana celular hace ósmosis, fagocitosis y difusión.

3.PROCEDIMIENTO

4. RESULTADOS Y DISCUSIÓN

4.1. RESULTADO PRÁCTICO

ALMIDÓN	AGUA	REACTIVO
Color Violeta	Amarillento(color del yodo)	Rx de Yodo (Lugol)

      4.2 DISCUSIÓN

En la práctica pudimos observar que al reaccionar el yodo con una muestra que contenía almidón  este se tornó de color violeta mientras que al reaccionar con el agua solo tomo el color característico del yodo, esto se debió a que el yodo o lugol solo identifica muestras que contienen almidón es por eso que con el agua no produjo reacción alguna.

5.   CONCLUSIONES

• La característica que presenta la reacción de yodo o lugol es que sirve para determinar almidón ,al reaccionar el almidón con el lugol forma un color violeta debido a que el almidón está constituido por amilosa que al reaccionar con el yodo da un color azul y amilopectina da un color rojo es por eso que al combinarse dan un color violeta,  y es una reacción de coloración.
• En el caso de la Investigación de polisacáridos (Almidón), la coloración fue producida por el Lugol y esto se debió a que el yodo se introduce entre las espiras de la molécula de almidón.La prueba del yodo es una reacción química usada para determinar la presencia de almidón u otros polisacáridos.Esta reacción es el resultado de la formación de cadenas de poliyoduro a partir de la reacción del almidón con el yodo,mientras que el agua con el yodo (lugol), solo toma la coloración del yodo que es amarillento. ya que no reacciona.
• Cambia de color porque el almidón estructuralmente es amilosa y amilopectina, la primera  al reaccionar con I2 va a dar un color azul, mientras que la amilopectina al reaccionar con el I2 va dar un color rojo, por lo tanto la mezcla de los dos nos va a dar la tonalidad violeta.

6. BIBLIOGRAFÍA

PRUEBA DEL YODO

http://es.wikipedia.org/wiki/Prueba_de_Seliwanoff

REACCIÓN DE MOLISH

IDENTIFICACIÓN DE CARBOHIDRATOS MEDIANTE  LA REACCIÓN DE MOLISH

1. OBJETIVO

           1.1 GENERAL

Identificar carbohidratos haciendo uso de la reacción de Molish.

1.2 ESPECÍFICO

• Indicar las características presentes en  la reacción de molish.
• Deducir que  finalidad tiene esta reacción y porque se dan los mismos.   

2. MARCO TEÓRICO

La reacción de Molisch es una reacción que tiñe cualquier carbohidrato presente en una disolución; es llamada así en honor del botánico austríaco Hans Molisch.

Se utiliza como reactivo una solución de α-naftol al 5% en etanol de 96º. En un tubo de ensayo a temperatura ambiente, se deposita la solución problema y un poco del reactivo de Molisch. A continuación, se le añade ácido sulfúrico e inmediatamente aparece un anillo violeta que separa al ácido sulfúrico, debajo del anillo, de la solución acuosa en caso positivo.

Es una reacción cualitativa, por lo que no permite saber la cantidad de glúcidos en la solución original.

3.PROCEDIMIENTO

4. RESULTADOS Y DISCUSIÓN

 4.1. RESULTADO PRÁCTICO

REACTIVO	GLUCOSA	FRUCTOSA	SACAROSA
Reactivo de Molish (alfa -naftol,ácido sulfúrico concentrado)	+   (Anillo violeta en la superficie más líquido  verde transparente)	+ (Anillo violeta en la superficie más líquido verde transparente)	+ Precipitado color violeta con reacción exotérmica

               4.3 DISCUSIÓN

En todas las muestras al añadir el reactivo de molish ocurrieron reacción esto se debe a que todas las muestras eran azúcares que es lo que este reactivo reconoce. Dando así para sacarosa un precipitado de color violeta y en la fructosa y glucosa un anillo violeta.

5.   CONCLUSIONES

• La característica que presenta la reacción de Molish es que al ser añadido en la muestra y al  añadir ácido sulfúrico  inmediatamente aparece un anillo violeta que separa al ácido sulfúrico, debajo del anillo, de la solución acuosa, otra característica es  que es una reacción de coloración.
• La finalidad u objetivo de esta reacción es determinar si la muestra obtenida es un azúcar o no.

6. BIBLIOGRAFÍA

http://es.wikipedia.org/wiki/Reacci%C3%B3n_de_Molisch